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病毒DNA/RNA共提試劑盒

整套試劑盒 RNase-Free,無需擔心 RNA 降解。

核酸得率高:DNA/RNA Column 和獨特配方搭配能高效的純化 DNA 和 RNA。

樣品處理量大:每次可處理多達 200μl 樣品。

速度快:操作簡便,可在 20 分鐘內(nèi)完成。

安 全:無需有機試劑抽提。

質(zhì)量高:提取得到的病毒核酸純度高,沒有蛋白和其它雜質(zhì)污染,能夠滿足下游各 種實驗應用。

產(chǎn) 品 名 稱

病毒DNA/RNA共提試劑盒

Viral DNA&RNA Isolation Kit

貨    號

DR-01011

DR-01013

規(guī)    格

50T

200T

價    格

¥1,010.00

¥3,372.00

描    述

快速從血漿、血清、無細胞體液和細胞培養(yǎng)上清液等樣品中高效率分離純化病毒的DNA或RNA

產(chǎn)品介紹

該試劑盒采用本公司研制的離心柱和配方,可以從血漿、血清、無細胞體液和細胞培 養(yǎng)上清液等樣品中高效率分離純化病毒的 DNA 和 RNA。試劑盒特別了 Linear Acrylamide,可以從體系中輕松捕獲微量 DNA 和 RNA,具有方便快捷、產(chǎn)量高、重復 性好的特點。DNA/RNA Column 能高效的結(jié)合 DNA 和 RNA,搭配獨特的配方,可以 同時處理大量樣品。

全體系 RNase-Free,使得純化得到的病毒核酸無降解;Buffer RW1、Buffer RW2 緩 沖液洗滌體系,使得獲得的病毒核酸無蛋白、核酸酶或其它雜質(zhì)的污染,可直接用于下游分子生物學實驗。


試劑盒應用

適用于血漿、血清、無細胞體液和細胞培養(yǎng)上清液等樣品中病毒核酸提取純化。


病毒核酸的應用

Viral DNA/RNA Isolation Kit 純化得到的病毒 DNA RNA 可用于各種下游分子實驗, 例如: Real Time PCR、RT-PCR、RT-qPCR、分子克隆等。


核酸的儲存

建議使用 RNase-Free ddH2O 洗脫核酸,即時用于下游實驗或儲存于-80。在-80存儲條件下,核酸可保存一年。

試劑盒組分信息

Linear Acrylamide:降低純化柱的本底吸附,捕獲體系中的微量核酸。

Buffer DRL:提供樣本裂解所需的環(huán)境以及過柱環(huán)境。

Buffer RW1:去除核酸中的蛋白質(zhì)等雜質(zhì)。

Buffer RW2:去除核酸中殘留的鹽離子。

RNase-Free ddH2O:洗脫純化柱膜上的核酸。

DNA/RNA Column:高效吸附核酸。


產(chǎn)品信息


型號

離心柱型

純化組件

Foregene離心柱、試劑

通量

1-24個樣品

制備時間

~20min(24個樣品)

離心機

臺式離心機

離心柱液體盛裝量

800μl

純化柱核酸承載量

20μg

樣品處理量

≤200μl

洗脫體積

30-50μl

操作流程


aa (2)


  • 純化獲得的核酸影響下游實驗

    Answer

    經(jīng)純化柱純化的DNA和RNA,如果鹽離子、蛋白質(zhì)含量過多會影響下游實驗,比如:PCR擴增,逆轉(zhuǎn)錄等。

    1. 洗脫后的DNARNA有鹽離子殘留。

    建議:確認Buffer RW2中添加了正確體積的無水乙醇,并按操作說明的離心轉(zhuǎn)速進行2次純化柱洗滌;如果還有鹽離子殘留,可在純化柱加入Buffer RW2后,室溫放置5min,再進行離心操作,以最大程度上去除鹽離子污染。

    2. 洗脫后的DNARNA有乙醇殘留。

    建議:確認Buffer RW2洗滌后,按操作說明的離心轉(zhuǎn)速進行空管離心操作;如果還有乙醇殘留,可以在空管離心后再室溫放置5min,以最大程度上去除乙醇殘留。


  • 純化獲得的核酸有降解

    Answer

    純化得到的核酸的質(zhì)量和樣品的保存、RNase污染、操作等因素有關。

    常見原因分析:

    1. 采集樣品沒有及時保存。

    建議:樣品在采集后若不及時使用,請立即低溫保存于-80中。提取RNA請盡量使用新近采集的樣品。

    2. 采集樣品反復凍融。

    建議:采集樣品保存過程中要避免凍融(不超過一次),否則會導致核酸得率降低。

    3. 操作間有RNase引入或沒有佩戴一次性手套、口罩等。

    建議:RNA提取實驗最好在單獨的RNA操作間進行,并在實驗前清理好實驗桌,實驗時佩戴一次性手套、口罩,最大程度上避免RNase引入導致的RNA降解。

    4. 試劑在使用過程中被RNase污染。

    建議:更換新的Viral DNA/RNA Isolation Kit進行相關實驗。

    5. RNA操作時所用的離心管、槍頭等有RNase污染。

    建議:確認RNA提取時所用到的離心管、槍頭、移液器等都是RNase-Free。


  • 提取不到核酸或者核酸產(chǎn)量低

    Answer

    通常會有多種因素影響回收效率,比如:樣本核酸含量、操作方法、洗脫體積等。

    常見原因分析:

    1. 樣品保存不當或樣本保存時間過久。

    建議:樣本保存于-80中,并避免反復凍融使用;盡量采用新鮮采集樣品進行核酸提取操作。  

    2. 樣品裂解不充分。

    建議:請保證樣品和裂解工作液徹底混勻,并且在室溫(15-25)孵育10min。

    3. 洗脫液添加不正確。

    建議:確認RNase-Free ddH2O滴加到了純化柱膜中間位置,切勿滴加到純化柱壓圈上。

    4. Buffer RW2中沒有添加正確體積的無水乙醇。

    建議:請按照說明書,在試劑盒使用前,在Buffer RW2中添加正確體積的無水乙醇并混勻。

    5. 樣品用量不合適。

    建議:每500μl Buffer DRL處理樣品200μl,樣品處理量過多會導致核酸提取量降低。

    6. 洗脫體積不合適或洗脫不徹底。

    建議:純化柱的洗脫液體積為30-50μl;若洗脫效果并不理想,建議在加入預熱的RNase-Free ddH2O后,延長室溫放置的時間,例如放置5-10min

    7. 純化柱在Buffer RW2洗滌之后有乙醇殘留。

    建議:如果在Buffer RW2洗滌,空管離心2min后還有乙醇殘留,可以在空管離心后將純化柱置于室溫5min,以充分除去殘留乙醇。


相關產(chǎn)品

COA